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마산만의 용존태 무기영양염의 제한정도를 파악하기 위해서 2011년 3월부터 12월까지 매월 1회 현장조사를 실시하였다(St. 2; Fig. 1). 채수수심은 표층, 중층(총 수심의 1/2 지점) 그리고 저층(퇴적물로부터 상부 1 m 수층)으로 반돈채수기를 이용하여 채수하였다. 분석항목으로는 NO₂-N, NO₃-N, NH₄-N, PO₄-P, SiO₂-Si 그리고 용존태 총질소(dissolved total nitrogen; DTN)이며, 모든 분석은 해양환경공정시험기준(MLTM[2010])에 의거하여 분석하였다. DIN은 NO₂-N, NO₃-N, NH₄-N의 합으로 나타내었으며, DIP는 PO₄-P 그리고 용존 무기규소(dissolved silicate; DSi)는 SiO₂-Si로 하였다. 또한 DON은 DTN을 분석한 후, 분석된 DIN을 공제하여 도출하였다.

A. tamarense는 2011년 4월 진해만(St. 2), A. catenella는 동년 6월에 마산만의 표층해수(St. 1)에서 pasteur pipette(Ø 50~100 μm)을 이용하여 분리하였다(Fig. 1; Guillard[1995]). 분리한 세포는 여과해수를 이용하여 3~4회 반복 세척하여 분리주를 확보하였다. 사용된 배지는 동해 외양수(N 36°24"938', E 130°42''055')를 바탕으로 한 개량형 f/2배지(Guillard and Ryther[1962])였으며, 분리주는 최종적으로 10 ml f/2 배지에 이식하였다. 정확한 종명을 파악하기 위해서 대수성장기 후기세포에 대하여 Calcofluor white M2R로 갑판배열을 확인하였다. 분리한 갑판 배열의 사진은 Oh et al.[2012]에 제시한 바 있으며, 정확한 종의 확인 후 배양실험을 실시하였다. 또한 분리한 세포에 대하여 AM9 항생제들을 이용하여 무균화 작업을 수행하였으며(Provasoli et al.[1959]), 4’,6-diamidino-2-phenylindole (DAPI) 검사를 통하여 세포에 대한 무균화를 검증하였다(Porter and Feig[1980]). 계대배양의 온도와 염분은 각각 20 ℃와 30 psu였으며, 광 조건은 300 μmol/m²/s(12L:12D, cool-white fluorescent lamp)였다. 더욱이 2차 생물학적 오염을 막기 위해서 모든 실험기구는 고압(202 kpa, 20 min) 및 건조멸균(120 ℃, 3 hr) 후 사용였으며, 모든 작업은 무균대에서 수행하였다.

Fig. 1. 

Map showing the stations for sampling and isolation of Alexandrium spp. in Jinhae and Masan Bay, Korea.

질소원에 따른 Alexandrium 속의 세포밀도의 증감은 현미경을 이용한 직접 검경이 아닌 in vivo chlorophyll 형광값을 활용하였으며, 세포밀도는 in vivo chlorophyll 형광값과 세포밀도의 높은 상관관계로부터 도출되었다. 이러한 방법은 형광광도계에서 직접 측정이 가능한 배양튜브를 이용하기에 세포밀도의 확인을 위한 배양튜브의 개폐가 없어 초기 배양상태를 계속 유지 할 수 있으며, 대량의 표본을 신속히 처리 할 수 있다(Brand et al.[1981]). 측정된 in vivo chlorophyll 형광값과 세포수 사이의 관계를 파악하기 위해, 각각의 세포를 현장수온과 염분에 상응하는 조건(20 ℃, 30 psu)하에서 광량은 약 300 μmol/m²/s에서 대수성장기가 될 때까지 배양하였다. 농축과 희석을 통해 여러 단계의 세포밀도를 조제하고, 형광광도계(Model 10-AU-005, Turner Designs, USA)로 in vivo chlorophyll 형광값을 측정하였다. 측정은 안정한 형광값을 얻기 위해서 약 5분동안 암조건에서 방치하여, 광계 II와 I의 전자 흥분상태를 약화시키고 측정하였다(Brand et al.[1981]). 그 결과 세포밀도와 형광값 사이에는 Fig. 2와 같이 통계적으로 매우 높은 유의성이 확인되었다.

Fig. 2. 

Relationships between cell density and in vivo chlorophyll fluorescence of Alexandrium tamarense and Alexandrium catenella.

A. tamarense와 A. catenella의 질소원에 대한 이용능력을 알아보기 위해 Table 1과 같이 18 종의 질소원을 이용하였다. 무기질소원은 2종, 유기질소원은 요소 1종, 그 외의 나머지 15종은 dissolved free amino acids(DFAA)였다. 실험에 사용된 배지는 AK 인공해수를 바탕으로 한 L1배지(30 psu, pH 8.16)이며(Keller et al.[1987]; Guillard and Hargraves[1993]), 각각의 18 종 질소 화합물 최종농도가 250 μM이 되도록 조제하였다. 한편, 계대 배양에 이용된 f/2배지와 본 실험에 이용된 L1배지의 일부 성분에 대한 조성의 차이에 따라 성장속도의 촉진 및 저해와 같은 예상치 못한 상황이 발생 할 가능성이 있다. 하지만 Oh et al.[2012]의 f/2배지에서 두 종의 최대성장속도(0.31~0.36 /day)와 본 연구 결과에서의 최대성장속도(0.30~0.38 /day)가 서로 유사하여 실험종인 A. tamarense와 A. catenella는 f/2와 L1배지에 따른 성장속도 차이는 없는 것으로 나타나, 실험을 위한 적합한 배지로 판단되었다. 세포내 질소 고갈을 위해 질소제한 AK 인공해수를 바탕으로 한 L1배지에 세포를 접종 하였으며, 성장이 정지되는 시기가(약 9~12일 소요, 최종 DIN 농도 1 μM 이하) 세포내 질소가 고갈되었다고 판단하였다. 이들 세포를 각각의 질소화합물이 첨가된 L1배지 5 ml에 약 100 cells/ml 가 되도록 접종하였다. 이틀간격으로 같은 시간(오전 10시)에 in vivo chlorophyll 형광값을 측정하였다. 세포의 성장속도(specific growth rate; μ)는 대수성장을 보이는 기간 동안의 형광값을 이용하여 다음 식 (1)에 의해 계산하였다.

N₀, N_t: 대수성장기에서 초기와 t시간 후의 세포수(cells/ml)

Δt: 대수성장기의 기간(/day)

모든 실험은 triplicate로 수행하였으며, 성장속도는 평균값으로 나타냈다. 단, 명백히 오류로 판단된 값은 성장속도 평균시 제외하였다.

NO₃-N과 NH₄-N 농도에 따른 Alexandrium 속의 성장속도를 파악하기 위해, AK 인공해수를 바탕으로 한 L1배지에 NO₃-N과 NH₄-N의 최종농도가 0.5, 1, 2, 5, 10, 20, 50, 100 μM의 총 8단계 농도가 되도록 조제하였으며, 질소 고갈 세포를 100 cells/ml가 되도록 접종하였다. 접종 직후를 포함해 매일 같은 시간(오전 10시)에 형광광도계를 이용하여 in vivo chlorophyll 형광값을 측정하였고, 성장속도는 식 (1)에 의해 계산하였다. 이때의 배양온도, 염분 및 광 조건은 두 종의 최적성장속도를 보였던 조건에서 수행하였다 즉, A. tamarense는 15 ℃, 30 psu, 300 μmol/m²/s 그리고 A. catenella는 25 ℃, 30 psu, 300 μmol/m²/s였다(unpublished data).

두 종의 성장속도와 영양염의 관계는 Monod 식에 대입하여 농도의 의존성을 정량적으로 파악하였다(Dugdale[1967]). 그리고 변수값(Ks)은 구해진 실험값을 아래의 식에 대입하여 비선형최소자 승법으로 계산하였다(Abe[1985]).

μ_max: 최대성장속도(/day)

Ks: 반포화상수(μM)

S: 영양염 농도(μM)

NO₃-N의 농도는 0.88~15.80 μM(4.97±3.33 μM)의 범위를 보였으며, 춘계에서 하계로 갈수록 점차 증가 하였다가 이후 감소하는 경향을 보였다(Fig. 3). NO₂-N의 농도는 0.08~1.86 μM(0.68±0.47 μM)의 범위를 보였으며, NO₃-N와 유사한 변동 경향을 보였다(Fig. 3). NH₄-N의 농도는 0.13~12.36 μM(3.81±3.02 μM)의 범위를 보였으며, 춘계에서 추계로 갈수록 점차 증가하였다가 이후 감소하는 경향을 보였다(Fig. 3). NO₂-N, NO₃-N 그리고 NH₄-N의 합인 DIN의 농도는 1.38~21.82 μM(9.45±4.65 μM)의 범위로, 8월 표·중층을 제외한다면, 하계로 갈수록 농도가 점차 증가하며, 동계로 갈수록 감소하는 경향을 나타내었다(Fig. 3). DIN은 9월 저층에서 NH₄-N가 약 80%를 차지하는 것을 제외하면 대부분 NO₃-N이 약 70%이상을 차지하고 있었다. 본 연구에서 Alexandrium 속이 출현하는 4월 부터 7월까지(Oh et al.[2012]) DIN농도는 2.23~9.60 μM의 범위로, 비교적 다른 시기보다 낮은 농도를 보였다. 그리고 DON의 농도는 2.79~22.89 μM(10.44±5.74 μM)의 범위로, 춘계에 최대값을 보인이후 점차 감소하는 경향을 보였다. DTN의 농도는 12.48~30.48 μM (19.89±5.23 μM)의 범위로, 7월에 비교적 높은 농도를 보인 것을 제외하면 3월부터 점차 감소하는 경향을 보였다(Fig. 3). 또한 DON은 DTN의 약 60%를 차지하고 있었다. Sharp[1983]와 Antia et al.[1991]에 의하면 연안해역에서 DON의 농도는 3~10 μM의 범위를 보이며, DTN 중 약 15%를 차지하는 것으로 보고하였다. 또한 미국의 Chesapeake Bay와 Casco Bay에서는 DTN 중 약 50%를 차지하는 것으로 보고되었다(Bronk and Glibert[1993]; Rebecca et al.[2005]). 마산만의 DON 농도는 기존에 보고된 해역보다 비교적 높게 분포하고 있었다.

Fig. 3. 

Monthly variations of NO₂-N, NO₃-N, NH₄-N, DIN, DON, DTN, DIP and DSi concentration in Masan Bay, Korea.

DIP의 농도는 0.25~3.59 μM(1.13±0.83 μM)의 범위를 나타냈다 (Fig. 3). 성층이 형성되는 여름철을 포함하여 6월부터 9월까지 표중층과 저층 사이에 뚜렷한 농도 차이를 보였으며, 저층의 DIP 농도는 표층의 약 4~5배 정도로 나타났다. 이러한 결과는 저층 퇴적물로부터의 용출에 의한 이차적인 공급에서 기인한 것으로, 성층형성으로 인해 표층으로의 공급이 제한되면서 더 큰 차이를 보인 것이라 생각된다. 실제 Lim et al.[2007]에 의해서도, 마산만의 모든 계절에 저층에서 높은 DIP농도가 나타나는 것은 퇴적물 기원으로 제시하였다.

DSi의 농도는 1.15~56.30 μM(22.80±14.42 μM)의 범위로, 8월 저층에서 최대 농도를 나타냈고, 4월 중층에서 최소값을 보였다 (Fig. 3). 성층이 형성되는 시기를 포함하여 4월~9월까지 저층 DSi의 농도는 표층과 약 10배 이상의 농도 차이를 보였다. 이러한 결과는 퇴적물로부터 용출에 의한 것으로 DIP 농도 분포와 유사하게 나타났다. Gle et al.[2008]은 퇴적물과 해수의 경계면에서 생물기원 규소(biogenic silica)의 용해에 의한 재생산(regeneration)이 해수에 유입되는 이차적 공급원으로, 특히 높은 수온과 높은 박테리아 밀도를 보이는 여름철에 가장 크게 나타난다고 보고하였다. 또한 Lim et al.[2007]의 마산만 현장관측 결과에서도 퇴적층으로부터의 DSi의 재공급 현상이 뚜렷하게 관찰된바 있다.

연안해역에서 영양염 구성성분 비의 변화는 일차생산자의 성장과 종간 경쟁을 유도해 종 천이를 유발하는 요인이 된다(Goldman et al.[1979]). 일반적으로 Redfield 비는 DSi:DIN:DIP=16:16:1로 알려져 있다(Redfield et al.[1963]). 하지만 Justic et al.[1995]은 상호복합적으로 연관되는 화학량론적 제한(stoichiometric limitation)을 제시하였으며, DIP 제한은 DSi:DIP>22 또는 DIN:DIP>22이며, DIN 제한은 DIN:DIP<10 또는 DSi:DIN>1, DSi 제한은 DSi:DIP<10 또는 DSi:DIN<1으로 평가하였다. 이를 마산만에 적용시켜보면 연중 DSi의 제한은 없는 것으로 보이며, 12월의 DIP 제한을 제외하고는 DIN이 제한영양염으로 작용하는 특성을 보였다(Fig. 4). 하지만, DIN이 제한인자로 작용하는 마산만에서 4월~7월까지 Alexandrium 속이 비교적 높은 밀도로 출현하는 것으로 보고되어 있어(Oh et al.[2012]), 영양염학적 측면에서 고려한다면, DIN 제한 하에서 성장 및 패독합성을 위해서는 다른 질소원의 공급이 필요함을 예측할 수 있다.

Fig. 4. 

Monthly variations of DIN:DIP, DSi:DIN and DSi:DIP in Masan Bay, Korea.

해수 중 DON의 화학적 조성은 아직 명확히 알려져 있지 않지만 일반적으로 고분자 DON(M.W.>1 kDa)과 저분자 DON으로 구분할 수 있다(Antia et al.[1991]). 고분자 DON은 protein, nucleic acids(DNA, RNA), humic substance 등이 포함되고, 저분자 DON의 경우는 urea, peptides, DFAA, amino sugars, purines, pyrimidines, pteridines, amides, methyl amides 등이 포함된다(Antia et al. [1991]). 특히, 저분자 DON은 일차생산자의 중요한 질소공급원으로 알려져 있다(Bronk[2002]). A. tamarense와 A. catenella는 질소 공급원으로서 DIN(NO₃-N, NH₄-N) 이외에 다양한 DON 화합물을 이용하여 성장을 유지하였다(Fig. 5). A. tamarense의 경우 요소에서 0.26 /day, DFAA에서 0.16~0.24 /day를 보여, DIN(0.29 /day)과 비교하여 요소는 약 90%, DFAA는 약 67%의 성장속도에 해당하였다. A. catenella는 요소에서 0.30 /day, DFAA에서 0.11~0.29 /day를 보여, DIN(0.31 /day)과 비교하여 요소는 약 99%, DFAA는 약 67%의 성장속도에 해당하였다.

Fig. 5. 

Specific growth rates of Alexandrium tamarense and Alexandrium catenella incubated with various nitrogen compounds.

일반적으로 DON은 DIN보다 고분자화합물이기 때문에 식물플랑크톤은 이들은 직접 흡수하지 못하고 특정 효소에 의한 가수분해산물인 NH₄-N의 형태로 흡수된다. Urease는 요소, amino oxidase는 아미노산의 가수분해시 이용되는 효소로 알려져 있다(Berns et al.[1966]; Syrett and Leftley[1976]; Mulholland et al. [1998]). 본 연구 결과 A. tamarense와 A. catenella는 요소의 경우 DIN의 성장속도와 비교하였을 때 비교적 높은 이용능력을 보였다. 본 연구와 유사하게 A. fundyense(Maine 만 분리주; Dyhrman and Anderson[2003]), A. tamarense(Kure 만 분리주; Leong and Taguchi[2004]), A.tamarense와 A. catenella(Hong Kong 연안역 분리주; Xu et al. [2012]), A. tamarense(동중국해 분리주; Li et al.[2011]) 등 Alexandrium 속의 서로 다른 종주에서 요소에 대한 높은 이용능력이 보고된 바 있다. 또한 와편모조류 Gymnodinium breve(Steidinger et al.[1998]), 규조류 Pseudo-nitzschia sp.(Auro and Cochlan[2012])에서도 유사한 결과를 보고하였다. 하지만 앞선 결과들과 상반되게 침편모조류 Chattonella antiqua, C. marina, C. ovata의 경우 DIN 대비 낮은 이용능력(40% 내외)을 보이며(Noh [2009]), Gyrodinium instriatum(Nagasoe et al.[2010])과 Gambierdiscus toxicus(Lartigue et al.[2009])경우 요소를 전혀 이용하지 않는다고 보고된 바 있다. 식물플랑크톤은 DIN제한하에서 성장을 유지하기 위해 요소를 이용하는 종과 그렇지 않은 종이 있었다. 특히, 요소를 이용하는 종 중에서도 그 이용능력은 차이를 보였다. 하지만, 이러한 차이가 종 특이성(species-specific)인지, 또 다른 생리활성과 관련이 있는지 설명하기 힘들지만 요소의 가수분해 효소인 urease 활성이 주변수의 DIN농도 이외에도 미량금속인 니켈(nickel)의 농도에도 민감하게 반응한다고 알려져 있기에(Oliveira and Antia [1984]; Milligan and Harrison[2000]), urease 활성 및 urea 이용이 DIN농도 외적인 요인에 의해 변화할 가능성이 있을 것으로 생각된다.

해수 중 DFAA는 일차생산자의 질소뿐만 아니라 탄소 공급원으로서 중요한 역할을 한다(Williams et al.[1976]; Wheeler and Kirchman [1986]). 본 연구 결과 A. tamarense와 A. catenella는 성분별 차이는 보였지만, 다양한 DFAA를 이용하여 성장을 유지할 수 있었다. A. tamarense와 A. catenella는 DFAA 중 공통적으로 이용되는 성분은 산성 아미노산(aspartic acid, glutamic acid)과 수산기 또는 황함유 아미노산(serine, threonine, methlonine) 계열이었으며, 성장에 이용되지 않는 성분은 염기성 아미노산(arginine, histidine) 계열과 2차 아미노기를 가지는 이미노산(proline) 계열로 실험에 사용된 질소화합물 중 가장 높은 분자량이었다. 일반적으로 분자량이 높을수록 화합물의 분해에 더 많은 생화학적 에너지가 소비되기에, 이들 종은 유기물 분해에 소비되는 에너지를 줄이기 위해서 DFAA 중 비교적 분자량이 낮은 성분을 선호하는 것으로 생각된다. 기존에 보고된 식물플랑크톤의 DFAA에 대한 이용성을 살펴보면 본 연구와 유사하게 침편모조류 C. antiqua, C. marina, C. ovata(Noh [2009]), 규조류 Skeletonema costatum(Fisher and Cowdell [1982]), Chaetoceros debile(Poulet and Martin-Jezequel[1983]), 와편모조류 G. breve(Baden and Mende[1979]), A. fundyense(John and Flynn[1999])에서 DFAA를 이용하여 성장이 가능한 것으로 보고하였다. 또한 요소를 이용하지 않았던 G. toxicus(Lartigue et al.[2009])는 DFAA를 성장에 이용하는 것으로 보고되었다. 반면에 G. instriatum(Nagasoe et al.[2010])는 요소와 마찬가지로 DFAA도 성장에 이용되지 않았다. 이상의 결과에서 A. tamarense와 A.catenella처럼 요소 및 다양한 성분의 DFAA 이용 능력은 DIN 제한 환경에서도 생존할 수 있는 중요한 생존전략으로 판단된다.

A. tamarense와 A. catenella는 NO₃-N 농도가 각각 50, 20 μM 까지 증가할수록 성장속도 역시 증가 하였으며, 그 이상에서는 성장속도가 일정하였다(Fig. 6). 유도된 성장식으로 부터 두 종의 μ_max는 0.30, 0.38 /day, Ks는 2.37, 5.04 μM로 나타났다. NH₄-N의 경우는 두 종 모두 20 μM 까지는 농도에 따라 성장속도가 증가하였으며, 그 이상의 농도에서는 성장저해현상 나타났다(Fig. 6). 유도된 성장식으로 부터 두 종의 μ_max는 0.26, 0.30 /day, Ks는 0.94, 0.65 μM 로 나타났다. 고농도의 NH₄-N에 대한 성장저해현상은 C. antiqua, C. marina(>250 μM), C. ovata(>30 μM), Heterosigma akashiwo (>50 μM), Karenia mikimotoi(>21 μM) 등에서도 보고된바 있다 (Nakamura and Watanabe[1983]; Iwasaki et al.[1990]; Noh[2009]). 각 식물플랑크톤의 NH₄-N에 대한 성장저해 및 내성은 종에 따른 생리적 차이로 이들을 수용하는 환경요인에 따라 각각 다른 생리적 특성을 나타낸다고 할 수 있다.

일반적으로 Ks는 제한 영양염에 대한 친화성(affinity)을 나타내는 기준으로(Dugdale[1967]), 이 값이 높을수록 영양염에 대한 친화성이 낮으며, 세포크기가 큰 종이 대략 높은 Ks 값을 보인다(Eppley et al.[1969]). A. tamarense와 A. catenella의 NO₃-N과 NH₄-N에 대한 Ks 값을 살펴보면 두 종 모두 NH₄-N의 Ks 값이 NO₃-N보다 낮아서 NH₄-N에 대한 친화성이 높은 것을 알 수 있다(Table 2). 이는 실제로 식물플랑크톤이 질소계열의 영양염 중에서 NH₄-N를 선택적으로 선호한다는 내용이 잘 반영된 결과이다(Strickland et al.[1969]; McCarthy[1980]).

Fig. 6. 

Specific growth rates of Alexandrium tamarense and Alexandrium catenella as a function of ammonium (NH₄-N) and nitrate (NO₃-N) concentration.

A. tamarense와 A. catenella의 NO₃-N과 NH₄-N에 대한 Ks 값을 비교하여 보면, NH₄-N의 Ks 값은 큰 차이가 없는 것으로 나타났으며, NO₃-N의 Ks 값은 A. catenella가 2배 이상 높은 것으로 나타났다 (Fig. 6). 이는 A. catenella가 A. tamarense 보다 NO₃-N에 대한 친화성이 낮은 것을 의미한다. Oh et al.[2012]에 의하면 A. tamarense와 A. catenella는 최적성장을 위한 수온의 조건이 다르며 비교적 고수온기에 A. catenella가 출현 가능한 것으로 보고하였다. 이와 더불어 본 연구의 영양염학적 측면을 동시에 고려하여도 수온뿐만 아니라 하계에 NO₃-N의 농도가 높게 나타났기에(Fig. 3) 춘계에서 하계로 갈수록 Alexandrium 속의 출현이 A. tamarense에서 A.catenella로 천이가 일어날 가능성이 있는 것으로 보인다.

Alexandrium 속의 Ks 값을 타종과 비교하여 보면, NH₄-N에 대한 Ks 값은 와편모조류 중에서는 비교적 낮은 값을 보였으며, NO₃-N의 경우는 Cochlodinium polykrikoides와는 유사한 반면 다른 종에 비해서는 낮아서 이들 와편모조류 군집 내의 종간 경쟁에서는 유리한 위치에 있을 것으로 생각된다(Table 2). 하지만 마산만을 비롯하여 우리나라 연안해역에서 연중 우점하여 출현하는 규조류들과 비교하면 NH₄-N에 대한 Ks값은 비슷한 반면 NO₃-N에 대한 Ks값은 높은 것으로 나타났다(Table 2). 이는 질소계열의 영양염 중에서 NO₃-N이 대부분을 차지하고 있는 마산만에서 종간 경쟁에서는 불리한 위치에 있는 것을 의미한다. 따라서 질산염에 대한 경쟁에서 불리한 위치에 있는 Alexandrium 속이 고밀도로 출현하여 PSP를 발생시키기 위해서는 DON의 이용능력은 생존과 우점화 전략에 중요한 변수로 고려될 수 있을 것이다.

한편, 식물플랑크톤 군집이 고밀도로 출현할 수 있는지는 해당종의 성장속도와 해수교환율에 좌우되기에(Margalef[1978]; Yamamoto and Okai[2000]), 성장속도가 낮은 Alexandrium 속이 고밀도로 출현하기 위해서는 해수교환율이 성장속도보다 낮아야 한다. 실제 마산만의 내측에서 해수체류시간이 100일 이상으로 매우 느린 해수 교환율을 보이고 있다(Park et al.[2011]). 더욱이 A. tamarense는 약 3.9 m/hr의 활발한 유영속도로(Lewis et al.[2006]), C. polykrikoides의 3.6 m/hr(Kim et al.[2004]), G. catenatum의 1.2 m/hr(Baba et al.[2001]), Gymnodinium mikimotoi의 2.2 m/hr(Koizumi et al.[1996]) 그리고 C. antique의 0.8 m/hr(Watanabe et al.[1995]) 보다도 빠른 유영속도이다. 이와 같은 유영능력은 해수교환에도 불구하고 오랫동안 수주에 머물게 할 수 있는 능력을 제공하며, 주·야간 수직이동을 통해서 주간에는 표층에서 활발한 광합성으로 유기물을 생산하여 에너지를 축적하고, 야간에는 저층으로 내려가 영양염을 흡수하여 대사에 필요한 영양분을 공급받을 수 있다(Eppley et al.[1968]; Watanabe et al.[1988]). 따라서 유영능력이 없고 NO₃-N에 대한 친화성이 높은 규조류와의 종간 경쟁에서 이들의 유영능력은 NO₃-N에 대한 경쟁에서 불리한 위치를 극복할 수 있는 방안으로 작용할 수 있을 것이다. 실제 현장관측에서도 질산염의 농도가 표층보다 저층에 높아 이 종의 유영능력에 따라 충분히 저층에서 필요한 NO₃-N을 흡수하여 성장할 수 있다. 더욱이 Alexandrium 속은 유영속도가 빠르기 때문에 많은 에너지원이 필요할 것이며, DON의 이용은 성장을 위한 부족한 질소 보충뿐만 아니라 유영에 필요한 탄소 에너지원으로도 이용될 것이다.